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熒光定量PCR實驗檢測服務
更新時間:2020-09-02   點擊次數(shù):1167次

熒光定量PCR實驗檢測

 

實驗原理

實時熒光定量PCR Quantitative Real-time PCR)是一種在DNA擴增反應中,以熒光化學物質(zhì)測每次聚合酶鏈式反應(PCR)循環(huán)后產(chǎn)物總量的方法。通過內(nèi)參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進行定量分析的方法。Real-timePCR是在PCR擴增過程中,通過熒光信號,對PCR進程進行實時檢測。由于在PCR擴增的指數(shù)時期,模板的Ct值和該模板的起始拷貝數(shù)存在線性關系,所以成為定量的依據(jù)。

二、實驗操作步驟:

1. 細胞培養(yǎng)及細胞傳代

  1. 倒置顯微鏡觀察細胞,評估細胞匯合的程度以及確認無細菌和真菌污染;
  2. 移去培養(yǎng)皿(瓶)中的培養(yǎng)液;
  3. 加入相當于培養(yǎng)液體積一半的PBS清洗單層細胞,一般三次即可;
  4. 1ml/25cm2表面積的量加入0.25%胰酶消化單層細胞。搖晃培養(yǎng)皿(瓶)使其胰蛋白酶覆蓋細胞單層,倒出多余的胰蛋白酶;
  5. 將培養(yǎng)瓶放回培養(yǎng)箱,放置2-10 min;
  6. 用倒置顯微鏡觀察細胞以確保所有細胞都分離且漂浮,輕拍培養(yǎng)皿(瓶)的一側(cè)來釋放殘留的貼壁細胞;
  7. 用少量的含新鮮血清的培養(yǎng)液重懸細胞以滅活胰蛋白酶,取出100-200μl用于計數(shù);
  8. 將所需數(shù)量的細胞移至一個新標記好的溫育過培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿(瓶)中;選擇適當培養(yǎng)條件培養(yǎng)細胞系;
  9. 按照細胞系的生長特性重復該步驟,直到胞狀態(tài)良好、無污染,可以鋪板使用,其余選擇凍存。

2.活細胞計數(shù)

  1. 取一瓶傳代的細胞,待長成單層以后使用;細胞懸液的制備方法:用0.25%的胰酶消化、PBS洗滌后,加入培養(yǎng)液吹打制成待測細胞懸液。
  2. 蓋好蓋玻片,取一套血球計數(shù)槽,制備計數(shù)用的細胞懸液:用吸管吸適量細胞懸液到離心管中,加入等體積臺盼藍染液,加入染液后就可以在顯微鏡下區(qū)別活細胞和死細胞。若僅是單純的進行細胞計數(shù),不考慮細胞的活力,則可不使用臺盼藍染色。
  3. 將細胞懸液滴入計數(shù)板,注意蓋玻片下不要有氣泡,也不要懸液流入旁邊槽中。
  4. 統(tǒng)計四個大格的細胞數(shù),將血球計數(shù)板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察,并移動計數(shù)板,當看到鏡中出現(xiàn)計數(shù)方格后,數(shù)出四角的大格(每格含有16個中格)中沒有被染液染上色的細胞數(shù)目。
  5. 計算原細胞懸液的細胞數(shù)。按照下面公式計算細胞密度:

6)(細胞懸液的細胞數(shù))/ml = (四個大格子細胞數(shù)/4×2×104

3.細胞處理

4.RNA提取

1)細胞中加入1ml Trizol,將細胞裂解吸到一個1.5mlEP管中;

2)加入200ul氯1仿,輕輕顛倒數(shù)次混勻,室溫放置5分鐘;

312000rpm4℃15min 4℃;

4)轉(zhuǎn)上層水相(約400ul)于新1.5ml EP管中,加入400ul異丙醇,混勻,室溫靜置10min;;

512000rpm 10min 4℃;

6)棄上清,沉淀用預冷的70%無水乙醇洗3次,空氣干燥5-10分鐘,溶于20ulDEPC水中;

7)分光光度計測定RNA濃度。

5.RNA cDNA第.一鏈合成

  1. 將逆轉(zhuǎn)所需要的物品準備好,RNA濃度計算好,tube準備并標記上;
  2. 在冰浴的nuclease-free PCR管中加入試劑
  3. 輕輕混勻,42度孵育15分鐘。
  4. 85度加熱5秒失活TransScript RT/RIgDNA Remover。
  5. 將上述溶液-20°C保存。

6.熒光定量PCR檢測

  1. cDNA樣品稀釋10倍作為模板上機檢測。
  2. 配制反應混合液
  3. PCR循環(huán)條件
  4. 儀器的操作

完成上述步驟后,把加好樣品的96孔板放在ABI Stepone plus型熒光定量PCR儀中進行反應。

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